O leitor de microplacas FilterMax F5 – Molecular Devices é um fluorímetro concedido pelo programa equipamentos multiusuários da FAPESP (Processo nº 2009/54219-8).

Dr. Heitor Franco de Andrade Jr. Laboratório de Protozoologia – LIM 49

Instituto de Medicina Tropical da USP Av. Dr. Enéas Aguiar, 470 Prédio I, 1º andar – Lab. de Protozoologia

O FilterMax F5 apresenta absorção (UV e visível), a intensidade de fluorescência – FI (superior e inferior de leitura), brilho de luminescência, a polarização de fluorescência (FP), fluorescência resolvida no tempo (TRF), por 6 – às placas de 1.536 poços. Além disso, o instrumento possui linear e agitação orbital, para além do controlo da temperatura. Os usuários podem programar ponto final, cinética, comprimento de onda múltipla, varredura linear e área de tipos de medição de digitalização. Este leitor possui múltiplos filtros que permite realizar a leitura de diferentes fluorescências sendo eles: 535nm, 485nm(polarizado), 485nm, 500nm, 370nm, 525nm, 540nm, 280nm, 320nm, 260nm, 595nm, 620nm, 360nm, 340nm, 405nm, 420nm, 492nm, 450nm, 595nm, 535nm, 535nm(polarizado), 625nm, 535nm, 430nm.

Leitura das placas de 96 a 1.536 poços (absorbância, UV e fluorescência)

Para agendamento e informações técnicas referentes ao equipamento, os usuários deverão entrar em contato com os responsáveis através do e- mail: citometriaimt@gmail.com

REGRAS PARA UTILIZAR O EQUIPAMENTO FILTERMAX F5 – MOLECULAR DEVICES 

• Os agendamentos dever ser feitos pelo sistema SKYNET no site http://intranet.imt.usp.br/ ou pelo email citometriaimt@gmail.com
• Cada usuário é responsável por todo o protocolo e reagentes de suas marcações.
• Utilizar os Equipamentos de Segurança Individual (EPIs), necessários durante a permanência na sala do equipamento.
• Trazer pendrive ou CD para gravar os dados brutos referentes ao experimento.
• Somente é permitido utilizar o equipamento para a captura dos dados. A posterior análise deverá ser feita pelo próprio pesquisador.

O equipamento BD LSRFORTESSA é um citometro de fluxo concedido pelo programa equipamentos multiusuários da FAPESP (Processo nº 2009/54219-8). Este equipamento foi solicitado com o objetivo de proporcionar aos pesquisadores do complexo HC-FMUSP acesso à técnica de citometria de fluxo de alto rendimento.

Dr. Heitor Franco de Andrade Jr. Laboratório de Protozoologia – LIM 49

Instituto de Medicina Tropical da USP Av. Dr. Enéas Aguiar, 470 Prédio II, 3º andar

Possui três lasers, sendo o laser azul (488nm), laser vermelho (640nm) e o laser violeta (405nm). Proporciona a detecção de tamanho e complexidade / granularidade celular relativa e mais onze distintas fluorescências simultaneamente, sendo elas: PerCP-Cy5-5, PE-Cy5, PerCP, PE, PE-Cy7, PE-Texas Red, PI, FITC, Alexa Fluor 488, APC-Cy7, APC-H7, APC, Alexa Fluor 700, AmCyan, Horizon V500, Qdot 525, Qdot 605, Pacific Blue, Horizon V450, Marina Blue e Alexa Fluor 405.

Citometria de Fluxo com detecção de até 11 distintas fluorescências simultâneas Agendamento e informações técnicas Para agendamento e informações técnicas referentes aos protocolos e reagentes necessários os usuários deverão entrar em contato com os responsáveis através do e-mail: citometriaimt@gmail.com

REGRAS PARA UTILIZAR O EQUIPAMENTO BD FORTESSA – BD

• Todos os usuários deverão receber um treinamento antes da utilização do equipamento. Este treinamento é fornecido a cada três meses e deve ser agendado pelo e- mail: citometriaimt@gmail.com. Nele o usuário receberá todo o treinamento de manuseio do equipamento, bem como, regras de utilização, manutenção e biossegurança.
• Os agendamentos dever ser feitos pelo sistema SKYNET no site http://intranet.imt.usp.br/ ou pelo email: citometriaimt@gmail.com
• Cada usuário é responsável por todo o protocolo e reagentes de suas marcações celulares.
• Trazer as amostras necessárias para a realização da calibração do equipamento, seguindo as orientações dadas previamente.
• Utilizar os Equipamentos de Segurança Individual (EPIs), necessários durante a permanência na sala do equipamento.
• Trazer pendrive ou CD para gravar os dados brutos referentes ao experimento.
• Somente é permitido utilizar o equipamento para a captura dos dados. A posterior análise deverá ser feita pelo próprio pesquisador.

O Laboratório de Gastroenterologia e Hepatologia Tropical dispõe de um sequenciador concedido pelo programa equipamentos multiusuários da FAPESP (Processo nº 2009/53946-3). Este equipamento foi solicitado com o objetivo de proporcionar aos pesquisadores do complexo HC-FMUSP acesso à técnica de sequenciamento e Análise de Fragmentos de DNA através de Eletroforese Capilar.

Dr. João Renato Rebello Pinho Laboratório de Gastroenterologia e Hepatologia Tropical – LIM 07

Instituto de Medicina Tropical da USP Avenida Dr. Enéas Aguiar, 470 Prédio II, 2º andar

Este equipamento realiza o sequenciamento de moléculas de DNA através de 8 capilares, permite a análise simultânea de 8 amostras e capacidade de leitura de até 6 fluorescências por amostras. Possui capacidade para análise de duas placas com 96 ou de 384 amostras e leitura de até 850 bases por amostra.

Sequenciamento de produtos de PCR Análise de fragmentos

• Cada usuário deverá preparar suas reações de sequenciamento e fornecer os reagentes necessários para a eletroforese capilar.
• O material para sequenciamento será recebido somente dentro do horário estabelecido pelo serviço e será processado por ordem de agendamento.
• Será necessário o agendamento com pelo menos uma semana de antecedência.
• Os resultados serão fornecidos na forma de arquivos eletrônicos, salvos somente em CD.
• A análise dos resultados é de responsabilidade do usuário.

O laboratório tem um técnico que é responsável pela operação do equipamento e pelo agendamento das corridas Para agendamento e informações técnicas referentes aos protocolos de sequenciamento e reagentes necessários para realização da eletroforese os usuários deverão entrar em contato com o profissional responsável através do e- mail: sequenciador.lim07@gmail.com